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Hábitat de Acinetobacter baumannii
- El primer Acinetobacter encontrado en el suelo fue descubierto en 1911 por MW Beijerinck.
- Está asociado con el medio acuático.
- Se ha recuperado del suelo, el agua, los animales y los seres humanos.
- Se encuentra en las secreciones respiratorias y orofaríngeas de individuos infectados.
- Se encuentra en un entorno hospitalario y representa el 10% de las infecciones nosocomiales en UCI.
- Se ha sugerido que la piel humana podría ser fuente de infecciones graves, como bacteriemia.
- El tracto respiratorio, la sangre, el líquido pleural, el tracto urinario, las heridas quirúrgicas, el SNC, la piel y los ojos pueden ser lugares de infección o colonización.
- Acinetobacter baumannii se dirige específicamente a tejidos húmedos como membranas mucosas o áreas de la piel que están expuestas, ya sea por accidente o lesión.
- Acinetobacter baumannii se encuentra solo en raras ocasiones como parte de la microflora normal de la piel, y un estudio estima que solo el 3% (como máximo) de la población está colonizada por la bacteria.
- Los pacientes que adquieren dispositivos artificiales como catéteres, suturas, ventiladores y aquellos que se han sometido a diálisis o terapia antimicrobiana en los últimos 90 días también corren el riesgo de desarrollar infecciones por A. baumannii .
- Acinetobacter baumannii tiene la capacidad de formar biopelículas en la superficie del tubo endotraqueal, lo que puede explicar los niveles relativamente altos de colonización en la parte inferior del tracto respiratorio.
- El patógeno aerobio y oportunista
- Sobrevive en un objeto inanimado durante semanas.
- Estudios recientes han demostrado que A. baumannii se puede encontrar en reservorios insospechados, como alimentos o artrópodos, y quedan por descubrir reservorios adicionales.
- Se han encontrado aislados de especies de Acinetobacter en una variedad de alimentos, incluidas las verduras crudas.
Morfología de Acinetobacter baumannii
- Los bacilos gramnegativos se vuelven esféricos en la fase estacionaria de crecimiento.
- Cocobacilar.
- Tamaño = 0,9 – 1,6 micrómetros por 1,5 – 2,5 micrómetros
- Agrupados por parejas o en cadena
- Pleomórfico.
- No móvil (puede existir una motilidad espasmódica)
- Encapsulado
- No esporulado
- Incluye porinas y canales de salida que contribuyen a la resistencia a los antibióticos.
Genoma de Acinetobacter baumannii
- Un solo cromosoma circular
- Pares de bases = 3,976,747
- Codificación de proteínas = 3.454
- Una cepa de A. baumannii llamada AYE contiene una isla de resistencia de 86 kb, llamada AbaR1, que está formada por 45 genes de resistencia.
- A. baumannii AYE tiene tres plásmidos, pero ninguno contiene marcadores de resistencia.
Características culturales de Acinetobacter baumannii
- Las especies de Acinetobacter son bacterias estrictamente aeróbicas, catalasa positivas, indol negativas y oxidasa negativas que en su mayoría están encapsuladas.
- Acinetobacter baumannii se presenta en humanos debido a la capacidad de la bacteria para crecer en condiciones mesotérmicas a 37 ° C.
- El medio más común para el crecimiento de A. baumannii incluye agar MacConkey y agar sangre de oveja.
- Para el aislamiento selectivo de las bacterias, se utilizan medios de laboratorio estándar como Trypticase Soy Agar y Brain Heart Infusion Agar.
- Las cepas ambientales de la bacteria pueden crecer en un amplio rango de temperatura con algunas cepas psicrófilas capaces de crecer a 4 ° C y algunas cepas termófilas que crecen a 48 ° C.
- El crecimiento de A. baumannii depende de la presencia de factores de crecimiento en medios artificiales.
- La capacidad de las bacterias para crecer en agar simple como el agar MacConkey se debe a la explotación de diversas fuentes de energía y carbono orgánico.
- A. baumannii puede utilizar compuestos como alcoholes alifáticos, aminoácidos, ácidos grasos, azúcares y muchos compuestos aromáticos recalcitrantes como benceno, ciclohexanol y 2,3-butanodiol.
- Las características de cultivo y los patrones de crecimiento de las bacterias se utilizan como método de identificación de A. baumannii .
- Los resultados de catalasa positiva y oxidasa negativa ayudan a distinguir las bacterias de otros géneros de la familia Neisseriaceae.
- Las bacterias utilizan el sistema del citocromo como cadena de transporte de electrones con inhibición de la actividad de la NADH oxidasa con la exposición al cianuro.
Las siguientes son algunas características culturales de A. baumannii en diferentes medios de cultivo:
una. Agar nutriente
- Las colonias de A. baumannii en agar NA parecen lisas y, a veces, mucoides. Las colonias son de color amarillo pálido a verde con tamaños de entre 1 y 2 mm de diámetro.
- En el caso de muestras ambientales, la superficie de las bacterias es lisa con bordes enteros y elevación elevada.
B. Agar MacConkey
- Las colonias de A. baumannii son pequeñas, translúcidas y brillantes que muestran un crecimiento aislado en el agar.
- La textura de las colonias puede variar en consistencia de butirosa a suave y mucoide, dependiendo de la fuente de aislamiento.
- El tamaño de las colonias es de entre 2 y 3 mm, pero el tamaño puede disminuir con una incubación prolongada, ya que las colonias tienden a reducir su tamaño.
Características bioquímicas de Acinetobacter baumannii
Caracteristicas basicas | Propiedades ( Acinetobacter baumannii ) |
Solubilidad en bilis | Negativo (-ve) |
Cápsula | Encapsulado |
Catalasa | Positivo (+ ve) |
Citrato | Positivo (+ ve) |
Coagulasa | Negativo (-ve) |
Flagelos | No flagelado |
Gas | Negativo (-ve) |
Hidrólisis de gelatina | Negativo (-ve) |
Tinción de Gram | Negativo (-ve) |
H2S | Negativo (-ve) |
Hemólisis | Negativo (-ve) |
Indol | Negativo (-ve) |
Motilidad | No móvil |
MR (rojo de metilo) | Negativo (-ve) |
Reducción de nitratos | Negativo (-ve) |
OF (oxidativo-fermentativo) | No fermentativo (oxidativo) |
Oxidasa | Negativo (-ve) |
Pigmento | Negativo (-ve) |
Forma | Cocobacilo |
Espora | Sin seguimiento |
Ureasa | Negativo (-ve) |
Vicepresidente (Voges Proskauer) | Negativo (-ve) |
Fermentación de | |
DNasa | Negativo (-ve) |
Galactosa | Positivo (+ ve) |
Glucosa | Positivo (+ ve) |
Lactato | Variable (+/-) |
Lactosa | Mayormente negativo (-ve), algo positivo (+ ve) |
Malonato | Positivo (+ ve) |
Maltosa | Variable (+/-) |
Manitol | Negativo (-ve) |
Manosa | Positivo (+ ve) |
Ramnosa | Positivo (+ ve) |
Sacarosa | Negativo (-ve) |
Xilosa | Positivo (+ ve) |
Reacciones enzimáticas | |
Arginina deshidrolasa | Positivo (+ ve) |
Azelate | Positivo (+ ve) |
Beta-lactamasa | Positivo (+ ve) |
Hidrólisis de esculina | Negativo (-ve) |
Histamina | Negativo (-ve) |
Histidina | Positivo (+ ve) |
Leucina | Positivo (+ ve) |
Lisina | Variable (+/-) |
Malato | Positivo (+ ve) |
Fenilalanina desaminasa | Positivo (+ ve) |
Hidrólisis de tirosina | Positivo (+ ve) |
Factores de virulencia de Acinetobacter baumannii
- La transmisión de Acinetobacter y la enfermedad subsiguiente se ve facilitada por la tenacidad ambiental del organismo, la resistencia a la desecación y la evasión de la inmunidad del huésped.
- Las propiedades de virulencia demostradas por Acinetobacter provienen principalmente de la evasión del aclaramiento rápido por parte del sistema inmunológico innato, lo que permite efectivamente una alta densidad bacteriana que desencadena la sepsis mediada por el receptor 4 tipo Toll (LPS) -Lipopolisacárido (TLR4).
- El polisacárido capsular es un factor de virulencia crítico que permite la evasión inmunitaria, mientras que el LPS desencadena un choque séptico.
- Sin embargo, el principal impulsor de los resultados clínicos es la resistencia a los antibióticos.
Patogenia de Acinetobacter baumannii
- La intrusión de un microorganismo requiere la adhesión de célula a célula para establecer la infección.
- Sin embargo, la capacidad de A. baumannii para anclarse con células / células mucosas es baja en comparación con otros microorganismos.
- La reducida adhesión e invasión de A. baumannii se atribuye a su baja virulencia; sin embargo, posee una capacidad hidrófoba que proporciona unión a materiales extraños como plásticos utilizados en dispositivos intravasculares.
- La proteína A de la membrana externa (OmpA) está asociada con la mejora de la adhesión, específicamente a las células epiteliales del tracto respiratorio. Se localiza en las mitocondrias y los núcleos e induce la expresión del citocromo c de la molécula proapoptótica , lo que provoca la muerte celular.
- A. baumannii evade la muerte mediada por la vía alternativa del complemento mediante la neutralización del factor H, un regulador clave de la vía alternativa del complemento, con la ayuda de OmpA. Este fenómeno se conoce como resistencia sérica de A. baumannii .
- OmpA induce la diferenciación de CD4 + , la activación y maduración de las células dendríticas y provoca su apoptosis prematura.
- La secreción de vesículas de la membrana externa que contienen diferentes proteínas relacionadas con la virulencia (proteasas, fosfolipasas, superóxido dismutasa y catalasa) en el sitio de la infección acelera la respuesta inmune innata local y, en última instancia, conduce a daño tisular.
- Las vesículas de la membrana externa también aumentan la formación de biopelículas en superficies abióticas.
- La cápsula de polisacárido juega un papel central en la protección de las bacterias contra la fagocitosis por parte del sistema inmunológico innato del huésped. Los lipopolisacáridos (LPS) de A. baumannii consisten en un antígeno O, el núcleo de carbohidratos y un resto de lípido A. El LPS es un agente quimiotáctico que recluta células inflamatorias y las obliga a liberar su material citotóxico.
- La capacidad de A. baumannii para formar biopelículas en superficies bióticas y abióticas es un mecanismo de resistencia bien estudiado. Para sobrevivir en condiciones desfavorables, se vuelve metabólicamente inerte en las capas más profundas de las biopelículas. La mala penetración y la incapacidad de los antibióticos para actuar sobre bacterias metabólicamente inertes aumentan su virulencia.
Características clínicas de Acinetobacter baumannii
- Las manifestaciones clínicas más frecuentes de la infección por Acinetobacter son la neumonía asociada al ventilador y las infecciones del torrente sanguíneo.
- Además, en los seres humanos, Acinetobacter puede colonizar la piel, las heridas y los tractos respiratorio y gastrointestinal.
Neumonía adquirida en el hospital
- La neumonía por Acinetobacter ocurre predominantemente en pacientes de la unidad de cuidados intensivos (UCI) que requieren ventilación mecánica y tiende a caracterizarse por un inicio tardío.
- Otras manifestaciones clínicas de la neumonía por Acinetobacter son similares a las reportadas para la neumonía intrahospitalaria en general como disnea, tos productiva, fiebre, dolor torácico, expansión asimétrica del tórax, disminución de la resonancia, egofonía, etc.
La comunidad adquirió neumonía
- La neumonía por Acinetobacter adquirida en la comunidad se caracteriza típicamente por una enfermedad fulminante con un inicio abrupto y una progresión rápida a insuficiencia respiratoria e inestabilidad hemodinámica.
- Se produce un choque séptico en alrededor de un tercio de los pacientes.
Infección del torrente sanguíneo
- Acinetobacter representa del 1,5 al 2,4 por ciento de las infecciones nosocomiales del torrente sanguíneo.
- Los factores de riesgo para la infección del torrente sanguíneo por Acinetobacter incluyen cuidados intensivos, ventilación mecánica, cirugía previa, uso previo de antibióticos de amplio espectro, inmunosupresión, trauma, quemaduras, malignidad, catéteres venosos centrales, procedimientos invasivos y estadía hospitalaria prolongada.
- La fiebre puede ser la única manifestación de bacteriemia. El choque séptico se desarrolla en hasta un tercio de los pacientes con bacteriemia por Acinetobacter .
Endocarditis
- Acinetobacter spp es una causa poco común de endocarditis infecciosa en el corazón nativo y protésico.
- La endocarditis por Acinetobacter se caracteriza típicamente por un inicio agudo con un curso agresivo.
- La mortalidad tiende a ser mayor en el contexto de la endocarditis de válvula nativa que en la endocarditis de válvula protésica, probablemente debido al bajo índice de sospecha que lleva a retrasar el tratamiento en tales casos.
Meningitis
- Acinetobacter es una causa poco frecuente de meningitis nosocomial.
- Los factores de riesgo incluyen procedimientos neuroquirúrgicos, fuga de líquido cefalorraquídeo (LCR), tratamiento previo con antibióticos y hemorragia intracraneal
- La mortalidad varía del 20 al 30 por ciento; Los déficits neurológicos en los pacientes sobrevivientes pueden ser graves.
- La mayoría de los pacientes con meningitis por Acinetobacter presentan fiebre, signos meníngeos y / o convulsiones.
- El líquido cefalorraquídeo (LCR) por lo general muestra pleocitosis con predominio de neutrófilos, concentración elevada de proteínas y una proporción baja de glucosa en el líquido cefalorraquídeo a suero. Otras manifestaciones clínicas de las infecciones del sistema nervioso central por Acinetobacter son similares a las notificadas para la meningitis en general.
Infección de la piel, los tejidos blandos y los huesos
- Acinetobacter puede contaminar heridas quirúrgicas y traumáticas, lo que lleva a una infección grave de los tejidos blandos que también puede progresar a osteomielitis.
- Acinetobacter rara vez se ha asociado con infecciones cutáneas adquiridas en la comunidad o en el hospital, como celulitis y foliculitis, así como con abscesos cutáneos y fascitis necrosante.
- Las infecciones de heridas traumáticas debidas al complejo Acinetobacter resistente a múltiples fármacos se han reconocido cada vez más después de las heridas de guerra; La contaminación ambiental de los hospitales de campaña parece desempeñar un papel importante en estas infecciones.
- La mayoría de las infecciones cutáneas por Acinetobacter comienzan con una rotura cutánea. La celulitis comienza como un parche edematoso bien delimitado con eritema, que a menudo tiene una apariencia de piel de naranja. Luego se transforma en una lesión similar al papel de lija caracterizada por numerosas vesículas que más tarde podrían evolucionar a ampollas hemorrágicas.
Infección del tracto urinario
- El tracto urinario puede colonizarse fácilmente con Acinetobacter , particularmente en el contexto de catéteres urinarios permanentes.
Otras infecciones
- Acinetobacter puede causar colonización o infección del ojo. Se ha observado colonización en usuarios de lentes de contacto. La infección ocular puede incluir úlceras corneales, endoftalmitis, celulitis periorbitaria e infección después de un traumatismo penetrante.
- Acinetobacter puede causar sinusitis nosocomial en pacientes ingresados en la unidad de cuidados intensivos; La ventilación mecánica es el factor predisponente más importante. La sinusitis por Acinetobacter se ha asociado con el desarrollo de neumonía, ya que los senos infectados sirven como reservorios para la diseminación al tracto respiratorio inferior.
- Se ha descrito peritonitis por Acinetobacter en pacientes sometidos a diálisis peritoneal. Las manifestaciones más frecuentes son dolor abdominal y un dializado turbio.
Diagnóstico de laboratorio de Acinetobacter baumannii
- El diagnóstico de infección por Acinetobacter se realiza mediante el crecimiento de Acinetobacter a partir de una muestra de un paciente (p. Ej., Esputo, sangre, líquido cefalorraquídeo) en el contexto de otros hallazgos clínicos que sugieren una infección en ese sitio.
- Dado que la colonización por Acinetobacter es común y el tratamiento es difícil y está potencialmente asociado con una toxicidad sustancial, la distinción entre colonización e infección, con el tratamiento reservado para las infecciones verdaderas, es importante.
- Por ejemplo, es más probable que Acinetobacter aislado del esputo de un paciente ventilado represente colonización que infección en ausencia de fiebre, leucocitosis, aumento de las secreciones respiratorias, necesidad de soporte respiratorio adicional o una nueva anomalía en las imágenes del tórax.
- Para los casos de neumonía, los cultivos cuantitativos o semicuantitativos en muestras de esputo también pueden ser útiles para distinguir entre infección y colonización.
Muestras y recolección de muestras
A. baumannii se ha aislado de sangre, esputo, piel, líquido pleural y orina, por lo general en infecciones asociadas a dispositivos.
Sangre
- Recolecte sangre mediante una técnica aséptica estricta.
- Limpie el tapón de goma del frasco de hemocultivo con una gasa con alcohol.
- Inocular sangre en frascos de hemocultivo.
- Etiquete los frascos de hemocultivo con la fecha, el nombre y el número de hospital del paciente y envíe las muestras al laboratorio.
- Mantener los frascos inoculados a 37 o C oa temperatura ambiente.
Esputo
- Entregue al paciente un recipiente estéril con tapón de rosca de boca ancha.
- Indique al paciente que inhale profundamente 2 o 3 veces y que tosa profundamente desde el pecho.
- Abra el recipiente y escupe el esputo en el frasco. Evite la saliva o las secreciones nasales.
- Cierre el recipiente para su posterior procesamiento.
Lavado broncoalveolar (BAL) y lavados bronquiales
- Recolecte muestras bronquiales inyectando un volumen variable de solución salina a través de un canal de broncoscopio y aspire en 3 a 4 alícuotas.
- Recoja el aspirado en un recipiente estéril desechable de boca ancha con tapón rojo de 40 ml o en frascos estériles.
- Recolecte los lavados bronquiales aspirando pequeñas cantidades de solución salina instilada de las grandes vías respiratorias del tracto respiratorio.
- Almacene las muestras en recipientes estériles desechables de boca ancha de 40 ml o, si proceden de la UCI, en frascos estériles de 100 ml.
Realizar tinción de Gram
Acinetobacter spp. aparecen en forma de cocobacilos y gramnegativos.
Identificación preliminar de Acinetobacter spp. por método de cultivo y propagación de cultivos de muestras
- Tome muestras de los tubos recolectados que mostraron cocobacilos gramnegativos en la tinción de Gram.
- Separe las muestras con un asa de inoculación estéril desechable en placas de agar nutritivo, agar MacConkey o agar sangre.
- Incubar las placas inoculadas a 37oC en condiciones aeróbicas.
- Debe observarse y documentarse la morfología de las colonias en placas de agar nutritivo, agar sangre y agar MacConkey.
- En agar nutritivo se observarán colonias no mucoides, opacas y circulares.
- En agar sangre se observarán colonias no hemolíticas, opacas, circulares y de color gris.
- En agar MacConkey, se observarán colonias circulares, opacas , sin lactosa, en fermentación.
- Inocular las reacciones bioquímicas para una identificación preliminar.
- Prueba de citocromo oxidasa (negativo)
- Medio de motilidad de manitol (manitol no fermentado y no móvil)
- Azúcar Triple agar hierro (Butt alcalina y la inclinación; No H 2 S o gas)
- Prueba de indol (negativo para indol)
- Prueba de utilización de citrato (citrato positivo)
- Prueba de ureasa (negativa)
- Inocular los productos bioquímicos para la identificación de especies.
- Medio oxidativo-fermentativo (utilización oxidativa de glucosa)
- Prueba de arginina descarboxilasa (positiva)
- Prueba de reducción de nitratos (negativa)
- Interprete los resultados basándose en controles positivos y negativos.
Tratamiento de las infecciones por Acinetobacter baumannii
- Aunque los carbapenémicos son antibióticos eficaces para tratar las infecciones por A. baumannii , la tasa de cepas de A. baumannii resistentes a los carbapenémicos ha aumentado gradualmente.
- El imipenem o la ceftazidima combinados con aminoglucósidos se utilizan para infecciones graves.
- Solo se encuentran disponibles unas pocas opciones de antibióticos eficaces para tratar las infecciones por A. baumannii por MDR . Para combatir la MDR o A. baumannii resistente a fármacos (PDR) , que son resistentes a todos los antibióticos disponibles, terapias de combinación, que incluyen colistina / imipenem, colistina / meropenem, colistina / rifampicina, colistina / tigeciclina, colistina / sulbactam, colistina / teicoplanina, e imipenem / sulbactam, se han estudiado ampliamente.
Prevención de la infección por Acinetobacter baumannii
- Acinetobacter puede vivir en la piel y sobrevivir en el medio ambiente durante varios días, lo que hace que la prevención de Acinetobacter baumannii sea un tema delicado.
- La atención cuidadosa a los procedimientos de control de infecciones, como la higiene de las manos y la limpieza ambiental, puede reducir el riesgo de transmisión.
- Los pacientes se colocan en aislamiento por contacto si se determina que el patógeno es MDR.
Higiene de manos
La higiene de las manos es la estrategia más fundamental, eficaz y rentable para reducir las infecciones cruzadas y evitar la propagación de bacterias resistentes.
Precaución de contacto
- El laboratorio de microbiología debe notificar a los médicos de manera oportuna y confiable cuando se identifica una cepa XDR-GNB.
- Los médicos pueden implementar medidas de precaución de contacto, como una habitación individual y una separación parcial de al menos 1 m entre las camas para los pacientes infectados con XDR-GNB, y reducir la práctica de compartir dispositivos.
- Se debe proporcionar esfigmomanómetro, estetoscopio, termómetro, bomba de infusión y otros dispositivos relevantes específicamente para pacientes con infección XDR-GNB.
Cribado activo
En la UCI y otras salas con cepas XDR-GNB altamente prevalentes, los pacientes deben ser examinados con muestras de hisopos perianales y rectales para CRE, secreción de heridas y región nasofaríngea para no fermentadores XDR para identificar rápidamente las bacterias resistentes mediante métodos convencionales o rápidos. métodos de diagnóstico. Los pacientes deben aislarse adecuadamente.
Desinfección ambiental de superficies
- La superficie de los objetos con los que el personal sanitario y los pacientes entran en contacto con frecuencia en el entorno hospitalario deben desinfectarse completa y regularmente.
- El etiquetado de fluorescencia o el sistema de monitoreo de higiene ATP se pueden utilizar para monitorear la efectividad de la desinfección y así asegurar que la transmisión de cepas resistentes se bloquee de manera efectiva.
Descolonización
Los pacientes colonizados con XDR-GNB pueden recibir un baño de esponja para todo el cuerpo con clorhexidina, que es útil para reducir las infecciones del torrente sanguíneo relacionadas con el catéter.
Dr. Martin Passen, a dedicated nutrition educator with a master’s in nutrition education and nearing completion of a clinical nutrition and dietetics master’s. Passionate about sharing valuable information effectively.